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RUNX3 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419487-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
RUNX3 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419487-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Runx3 kodiert den Transkriptionsfaktor RUNX3, ein DNA-bindendes Protein mit Runt-Domäne, das mit CBFβ zusammenwirkt, um Festlegung der Zelllinie, Differenzierung und Gewebehomöostase zu regulieren. In Mauszellen integriert RUNX3 Signale aus den TGF-β/SMAD- und Wnt/β-Catenin-Signalwegen, um Transkriptionsprogramme zu modulieren, die Zellzyklusprogression, Apoptose und die Entwicklung von Immunzellen steuern. Die Aktivität von Runx3 ist besonders relevant für die Reifung zytotoxischer Lymphozyten und die epitheliale Differenzierung; veränderte Expression oder Funktion ist dabei mit dysregulierter Proliferation und entzündlichen Phänotypen verbunden. Diese Eigenschaften machen Runx3 zu einem nützlichen Knotenpunkt, um Transkriptionsschaltkreise und Signalweg-Crosstalk in entwicklungs- und krankheitsrelevanten Modellsystemen zu analysieren.
RUNX3 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Runx3-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Runx3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Runx3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Runx3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.