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PEBP2β CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401983-ACT | 20 µg | $397.00 |
CBFB kodiert die Beta-Untereinheit des Core-Binding-Faktors (PEBP2β), einen nicht an DNA bindenden Partner, der mit Transkriptionsfaktoren der RUNX-Familie Heterodimere bildet, um die DNA-Bindung zu verstärken und Transkriptionskomplexe zu stabilisieren. Diese RUNX/CBFβ-Achse reguliert linienspezifische Genexpressionsprogramme, die zentral für Hämatopoese, Immundifferenzierung, Osteogenese und Zellzykluskontrolle sind. Die CBFB-abhängige Transkription beeinflusst Signalwege, die die myeloide und lymphoide Entwicklung, die Ausprägung von Zytokin-Signalen sowie die Reifung skelettaler und stromaler Zelllinien steuern. Eine Fehlregulation von CBFB, einschließlich chromosomaler Umlagerungen und veränderter RUNX-Interaktionen, ist an der Biologie hämatologischer Malignome und an Entwicklungsphänotypen beteiligt und macht CBFB zu einem geeigneten Knotenpunkt für mechanistische Studien der Transkriptionskontrolle.
PEBP2β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CBFB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PEBP2β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CBFB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CBFB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PEBP2β-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CBFB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PEBP2β-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PEBP2β-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CBFB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.