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osteopontin/OPN/SPP1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400219-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
osteopontin/OPN/SPP1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400219-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SPP1 kodiert Osteopontin (OPN), ein sekretiertes Phosphoglykoprotein, das außerdem als extrazellulärmatrix-assoziiertes Zytokin wirkt und Zelladhäsion, Migration und Überleben reguliert. OPN signalisiert über Integrine (z. B. αvβ3) und CD44 und moduliert so die Dynamik fokaler Adhäsionen, den Umbau des Zytoskeletts sowie nachgeschaltete Signalwege einschließlich PI3K–AKT, MAPK/ERK und NF-κB. Es wird von mehreren Zelltypen exprimiert, darunter Immun- und Stromazellen, und trägt zu inflammatorischer Signalgebung, Makrophagen-Polarisierung und Gewebeumbau-Programmen bei. Eine fehlregulierte SPP1/OPN-Expression wird häufig im Kontext von Tumorinvasion und Metastasierung, Fibrose und chronisch-entzündlichen Erkrankungen untersucht, wo sie als mechanistischer Knotenpunkt dient, der extrazelluläre Signale mit promigratorischen und pro-survival Transkriptionsantworten verknüpft.
osteopontin/OPN/SPP1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SPP1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SPP1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SPP1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SPP1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.