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mucolipin 1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-430117-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
mucolipin 1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-430117-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Mcoln1 kodiert Mucolipin 1 (TRPML1), einen endolysosomalen, Ca2+-durchlässigen Kationenkanal, der die lysosomale Ionenhomöostase, den Membrantransport sowie die Fusions‑/Spaltungsdynamik reguliert. Indem TRPML1 die Freisetzung von luminalem Ca2+ mit nachgeschalteten Effektoren koppelt, unterstützt es den Durchsatz der Autophagie‑Lysosomen‑Achse, die Verarbeitung endozytischer Fracht und die lysosomale Exozytose, die für zelluläre Clearance und Nährstoffsensorik wichtig ist. Die Mcoln1‑abhängige Signalgebung überschneidet sich mit lysosomalen Stressantworten und Programmen des vesikulären Transports, die die mitochondriale Qualitätskontrolle und inflammatorische Signalwege beeinflussen. Eine Störung der TRPML1‑Funktion ist mit lysosomaler Speicherpathologie und neurodegenerativen Phänotypen verbunden und macht Mcoln1 zu einem wichtigen Ziel für mechanistische Studien endolysosomaler Dysfunktion in Mausmodellen.
mucolipin 1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Mcoln1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Mcoln1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Mcoln1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Mcoln1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.