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LPAAT-ζ Double Nickase Plasmid (h) | sc-410305-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LPAAT-ζ Double Nickase Plasmid (h2) | sc-410305-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GPAT4 kodiert die Lysophosphatidsäure-Acyltransferase Zeta (LPAAT-ζ), ein mit dem endoplasmatischen Retikulum assoziiertes Enzym, das Lysophosphatidsäure acyliert und dadurch Phosphatidsäure erzeugt – ein zentrales Zwischenprodukt der de-novo-Biosynthese von Glycerolipiden. Durch die Kontrolle der Verfügbarkeit von Phosphatidsäure beeinflusst LPAAT-ζ die Bildung von Triacylglycerinen und Phospholipiden, die Biogenese von Lipidtröpfchen sowie Prozesse des Membranumbaus, die mit der metabolischen Homöostase verknüpft sind. Der GPAT4-abhängige Lipidfluss kann zelluläre Stressantworten und die Organellenfunktion über Effekte auf Membranzusammensetzung und Signallipide modulieren. Fehlregulierte Glycerolipidbiosynthese und Lipidspeicherwege unter Beteiligung von GPAT4 sind relevant für Studien zur Biologie metabolischer Erkrankungen, zu steatosebezogenen Mechanismen sowie zur lipidgetriebenen Signalgebung in Modellen für Krebs und Entzündung.
LPAAT-ζ Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GPAT4-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GPAT4 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GPAT4-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GPAT4-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.