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Dkk-1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400540-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane DKK1-Gen kodiert das Dickkopf-verwandte Protein 1 (Dkk-1), einen sezernierten Antagonisten der kanonischen Wnt/β‑Catenin-Signalübertragung, der an die Korezeptoren LRP5/6 bindet und die Assemblierung des Rezeptorkomplexes moduliert. Indem Dkk-1 Wnt-getriebene Transkriptionsprogramme bremst, beeinflusst es Zellschicksalsentscheidungen, Proliferation und Differenzierung, mit wichtigen Funktionen in der embryonalen Musterbildung und im Knochenumbau. Eine dysregulierte DKK1-Expression ist mit einer aberranten Wnt-Signalwegaktivität assoziiert, wie sie in der Onkologie, in entzündlichen Kontexten und in der Biologie muskuloskelettaler Erkrankungen beobachtet wird, wo Dkk-1 stromal–tumorale Interaktionen und osteolytische Prozesse umgestalten kann. Als Regulator auf Signalweg-Ebene wird DKK1 häufig untersucht, um Rückkopplungen im Wnt-Netzwerk, extrazelluläre Signalgradienten und β‑Catenin-abhängige Transkriptionsoutputs zu kartieren.
Dkk-1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen DKK1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Dkk-1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des DKK1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der DKK1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Dkk-1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native DKK1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Dkk-1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Dkk-1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem DKK1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.