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CX3CR1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419886-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CX3CR1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419886-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Cx3cr1 kodiert den Chemokinrezeptor CX3CR1, einen G‑Protein‑gekoppelten Rezeptor, der an membrangebundenes und lösliches CX3CL1 (Fraktalkin) bindet und dadurch Leukozytenadhäsion, Chemotaxis und Überleben reguliert. In der Maus wird CX3CR1 stark in Monozyten/Makrophagen, dendritischen Zellen und Mikroglia exprimiert und prägt die Immunüberwachung, das Entzündungstrafficking sowie die Kommunikation zwischen Neuronen und Glia. Die Signalübertragung über CX3CR1 moduliert u. a. Signalwege wie GPCR‑vermittelten Calciumfluss, PI3K/AKT und MAPK und beeinflusst dadurch Zytokinproduktion und phagozytische Antworten. Eine veränderte CX3CR1‑Aktivität wurde mit Neuroinflammation und synaptischem Remodeling sowie mit kardiovaskulärer und metabolischer Entzündung in Verbindung gebracht, was seine Nutzung in Modellen von Gewebeschädigung und Mechanismen chronisch‑entzündlicher Erkrankungen unterstützt.
CX3CR1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Cx3cr1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Cx3cr1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Cx3cr1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Cx3cr1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.