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CD130/gp130 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400301-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
CD130/gp130 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400301-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
IL6ST kodiert CD130/gp130, einen ubiquitär exprimierten signaltransduzierenden Korezeptor, der von Zytokinen der IL-6-Familie gemeinsam genutzt wird, darunter IL6, IL11, LIF, OSM, CNTF und CT‑1. Nach Ligandenbindung zusammen mit Partner-Rezeptoruntereinheiten aktiviert gp130 die JAK/STAT3- und STAT1-Signalübertragung und ist zudem mit den MAPK/ERK- und PI3K/AKT-Signalwegen verknüpft, um Zellüberleben, Proliferation, Differenzierung, Akutphasenreaktionen und die Immunhomöostase zu regulieren. Eine fehlregulierte gp130-abhängige Signalgebung wird mit chronischer Entzündung und Autoimmunität, tumorfördernder Signalgebung in der Mikroumgebung sowie aberranten Programmen hämatopoetischer und stromaler Zellen in Verbindung gebracht, wodurch IL6ST einen zentralen Knotenpunkt für die Analyse von Signalwegen in humanen Zellmodellen darstellt.
CD130/gp130 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IL6ST-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CD130/gp130 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IL6ST-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IL6ST-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CD130/gp130-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IL6ST-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CD130/gp130-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CD130/gp130-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IL6ST-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.