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ACTR-IIA Double Nickase Plasmid (h) | sc-402524-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ACTR-IIA Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402524-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ACVR2A kodiert den Activin-Rezeptor Typ IIA (ACTR‑IIA), einen transmembranären Serin/Threonin-Kinase-Rezeptor, der Activine und verwandte Liganden der TGF‑β-Superfamilie bindet, um die SMAD2/3-Signalübertragung zu initiieren. Über die Bildung von Rezeptorkomplexen mit Typ‑I-Rezeptoren reguliert ACTR‑IIA Transkriptionsprogramme, die Zellproliferation, Differenzierung, Apoptose, epitheliomesenchymale Dynamiken und die Homöostase der extrazellulären Matrix steuern. ACVR2A-abhängige Signalgebung trägt zur Gewebeentwicklung sowie zur Immun- und Entzündungsregulation bei, und Störungen dieses Signalwegs werden häufig im Zusammenhang mit fehlregulierter TGF‑β/Activin-Signalgebung untersucht. Genetische und signalwegbezogene Veränderungen unter Beteiligung von ACVR2A wurden in mehreren krankheitsassoziierten Kontexten beschrieben, darunter Krebs und gastrointestinale Erkrankungen, was seinen Wert als Knotenpunkt für mechanistische Signalweg-Analysen unterstreicht.
ACTR-IIA Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ACVR2A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ACVR2A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ACVR2A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ACVR2A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.