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ZO-1 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-400196-ACT | 20 µg | $397.00 |
Il gene umano **TJP1** codifica per la **zonula occludens-1 (ZO-1)**, una proteina scaffold multidominio che organizza i complessi delle giunzioni serrate collegando claudine e occludina al citoscheletro corticale di actina tramite interazioni mediate da PDZ. ZO-1 coordina la formazione della barriera epiteliale ed endoteliale, la polarità apico-basale e la meccano-trasduzione a livello giunzionale, integrando segnali che influenzano il rimodellamento del citoscheletro e il controllo della crescita dipendente dal contatto. Attraverso queste funzioni, TJP1/ZO-1 contribuisce alla regolazione della permeabilità paracellulare e dei programmi di migrazione cellulare rilevanti per processi quali le transizioni epitelio–mesenchimali e il rimodellamento tissutale. Un’alterata localizzazione o espressione di ZO-1 è spesso oggetto di studio nella patobiologia associata alle barriere, incluse le variazioni di permeabilità legate all’infiammazione e i fenotipi di progressione tumorale in diversi contesti epiteliali.
ZO-1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di TJP1 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
ZO-1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus TJP1 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione TJP1, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di ZO-1. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus TJP1 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da ZO-1 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via ZO-1 nelle cellule tumorali con espressione di TJP1 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.