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RBP-Jκ Plasmide di attivazione CRISPR (m) | sc-422626-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
RBP-Jκ Plasmide di attivazione CRISPR (m2) | sc-422626-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Rbpj codifica RBP-Jκ, un fattore di trascrizione che si lega al DNA in modo specifico per sequenza e che funge da principale effettore nucleare della segnalazione canonica di Notch. In seguito all’attivazione del recettore Notch, RBP-Jκ coordina il passaggio dalla repressione all’attivazione trascrizionale per regolare l’impegno di linea, la differenziazione e le decisioni di destino cellulare nei compartimenti ematopoietico, neurale e immunitario. Questa via si interseca con il rimodellamento della cromatina e con programmi trascrizionali dipendenti dal contesto che modellano il mantenimento di cellule staminali/progenitrici e il patterning dello sviluppo. Un controllo trascrizionale RBP-Jκ/Notch deregolato è ampiamente studiato in modelli di proliferazione aberrante, disfunzione immunitaria e fenotipi dello sviluppo rilevanti per l’oncogenesi e l’omeostasi tissutale.
RBP-Jκ Il plasmide di attivazione CRISPR (m) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di Rbpj senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
RBP-Jκ Il plasmide di attivazione CRISPR (m) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus Rbpj nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione Rbpj, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di RBP-Jκ. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus Rbpj nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da RBP-Jκ nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via RBP-Jκ nelle cellule tumorali con espressione di Rbpj silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.