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Bad Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-400419-ACT | 20 µg | $397.00 |
BAD umano (BCL2 associated agonist of cell death) codifica Bad, un membro pro-apoptotico “BH3-only” della famiglia BCL-2 che integra i segnali di sopravvivenza e di morte a livello dei mitocondri. Bad promuove la permeabilizzazione della membrana mitocondriale esterna legandosi e neutralizzando proteine anti-apoptotiche come BCL-2 e BCL-XL, facilitando così l’attivazione di BAX/BAK e l’apoptosi dipendente dalle caspasi. La sua attività è regolata in modo rigoroso dalla fosforilazione e dal sequestro a valle delle vie di segnalazione PI3K/AKT e MAPK, collegando la segnalazione dei fattori di crescita all’apoptosi intrinseca e al controllo metabolico. Una segnalazione di BAD deregolata è stata implicata in soglie apoptotiche alterate rilevanti per la biologia del cancro, la neurodegenerazione e le risposte allo stress.
Bad Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di BAD senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
Bad Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus BAD nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione BAD, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di Bad. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus BAD nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da Bad nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via Bad nelle cellule tumorali con espressione di BAD silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.