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ENT2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401952-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ENT2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401952-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SLC29A2 kodiert den equilibrativen Nukleosidtransporter 2 (ENT2), einen breit exprimierten Transporter der Plasmamembran, der einen bidirektionalen, konzentrationsabhängigen Transport von Purin- und Pyrimidin-Nukleosiden vermittelt. ENT2 unterstützt Nukleosid-Salvage-Wege, die die Nukleotidpools für die DNA-/RNA-Synthese aufrechterhalten, und trägt zu zellulären Antworten auf metabolischen Stress bei, indem er die Verfügbarkeit von Nukleosiden außerhalb und innerhalb der Zelle reguliert. Durch die Prägung der Nukleosidhomöostase ist ENT2 an Prozessen wie Zellzyklusprogression, Replikationsstressantworten und nukleosidabhängiger Signalübertragung in vielen Geweben beteiligt. Veränderte Aktivität und Expression von SLC29A2/ENT2 wurden u. a. im Kontext der Tumorbiologie, der Funktion von Immunzellen sowie transporterbedingter Unterschiede in der zellulären Empfindlichkeit gegenüber Nukleosidanaloga untersucht, was seine Relevanz für mechanistische Studien unterstreicht.
ENT2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SLC29A2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SLC29A2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SLC29A2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SLC29A2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.