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EAAT1 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-400917-ACT | 20 µg | $397.00 |
SLC1A3 codifica il trasportatore di aminoacidi eccitatori 1 (EAAT1), un trasportatore di glutammato e aspartato ad alta affinità, dipendente dal sodio, che mantiene l’omeostasi extracellulare del glutammato e limita la segnalazione eccitotossica. EAAT1 è espresso in modo marcato negli astrociti e contribuisce al ciclo glutammato–glutammina, accoppiando la rimozione del neurotrasmettitore al metabolismo energetico cellulare e ai gradienti ionici. Modellando la trasmissione sinaptica e proteggendo i circuiti neuronali da un’eccessiva attività glutammatergica, SLC1A3 influenza processi neuroevolutivi e neurodegenerativi. Alterazioni dell’espressione o della funzione di EAAT1 sono state associate a una disregolazione della segnalazione del glutammato in contesti di malattie neurologiche e psichiatriche, a supporto del suo impiego in studi meccanicistici della neurotrasmissione eccitatoria.
EAAT1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di SLC1A3 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
EAAT1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus SLC1A3 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione SLC1A3, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di EAAT1. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus SLC1A3 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da EAAT1 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via EAAT1 nelle cellule tumorali con espressione di SLC1A3 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.