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CIDE-A Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-405086-ACT | 20 µg | $397.00 |
CIDEA (cell death–inducing DFFA-like effector A) codifica la proteina associata alle goccioline lipidiche CIDE-A, un regolatore chiave dell’accumulo di lipidi neutri e del metabolismo degli adipociti. Nei programmi correlati al tessuto adiposo umano e al grasso bruno/beige, CIDE-A favorisce la crescita e il rimodellamento delle goccioline lipidiche e influenza il turnover dei trigliceridi, collegando la dinamica di deposito dei lipidi all’attività mitocondriale e alle reti geniche termogeniche. L’espressione e la funzione di CIDEA sono strettamente legate alle vie dell’omeostasi energetica, inclusi l’adipogenesi e i processi di gestione dei lipidi, e sono state associate a fenotipi metabolici quali obesità, insulino-resistenza e disregolazione lipidica correlata alla steatosi epatica. In quanto effettore metabolico dipendente dal tessuto e dallo stato cellulare, CIDE-A è comunemente studiata per il suo ruolo nella differenziazione adipocitaria, nella biologia delle goccioline lipidiche e nelle risposte allo stress nelle cellule metabolicamente attive.
CIDE-A Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di CIDEA senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
CIDE-A Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus CIDEA nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione CIDEA, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di CIDE-A. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus CIDEA nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da CIDE-A nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via CIDE-A nelle cellule tumorali con espressione di CIDEA silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.