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St3Gal-I Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-411005-ACT | 20 µg | $397.00 |
ST3GAL1 codifica la sialiltransferasi umana St3Gal-I localizzata nel Golgi, che catalizza il trasferimento dell’acido sialico con un legame α2,3 su strutture Galβ1-3GalNAc per formare l’antigene sialil-T sugli O-glicani. Questa attività modella la O-glicosilazione di tipo mucinico, influenzando la maturazione delle glicoproteine, le interazioni cellula-cellula e la segnalazione mediata da lectine sulla superficie cellulare. Un’alterata sialilazione dipendente da ST3GAL1 è stata associata a cambiamenti nell’adesione, nella migrazione e nel riconoscimento immunitario attraverso la modulazione di epitopi glicani. La deregolazione dell’attività di St3Gal-I è riportata in molteplici contesti rilevanti per la malattia, inclusi i pattern di glicosilazione associati ai tumori e i microambienti infiammatori, rendendola un nodo utile per lo studio delle vie di regolazione della glicosilazione.
St3Gal-I Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di ST3GAL1 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
St3Gal-I Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus ST3GAL1 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione ST3GAL1, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di St3Gal-I. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus ST3GAL1 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da St3Gal-I nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via St3Gal-I nelle cellule tumorali con espressione di ST3GAL1 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.