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VAP-A Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-403093-ACT | 20 µg | $397.00 |
VAPA codifica la proteina A associata alla proteina di membrana associata alle vescicole (VAP-A), un adattatore residente nel reticolo endoplasmatico (RE) che organizza i siti di contatto tra membrane e coordina lo scambio lipidico, il traffico vescicolare e la comunicazione tra organelli. VAP-A si lega a partner contenenti il motivo FFAT per regolare l’omeostasi di fosfoinositidi e steroli, sostenendo il trasporto RE–Golgi, la dinamica degli endosomi e la segnalazione RE–mitocondri. Attraverso questi processi, VAP-A influenza la proteostasi, l’autofagia e le risposte allo stress che modellano il metabolismo e la sopravvivenza cellulari. La disregolazione della biologia dei siti di contatto legata a VAPA è stata implicata nella neurodegenerazione e in altri disturbi associati ad alterazioni nella gestione dei lipidi e allo stress del RE, rendendolo un nodo utile per studi meccanicistici sull’organizzazione delle membrane.
VAP-A Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di VAPA senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
VAP-A Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus VAPA nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione VAPA, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di VAP-A. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus VAPA nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da VAP-A nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via VAP-A nelle cellule tumorali con espressione di VAPA silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.