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| Nome del prodotto | Codice del prodotto | UNITÀ | Prezzo | Quantità | Preferiti | |
Hox11 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-404662-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
Hox11 Plasmide di attivazione CRISPR (h2) | sc-404662-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
TLX1 (Hox11) è un fattore di trascrizione homeobox che regola la patterning embrionale e la specificazione di linea cellulare, con ruoli di rilievo nei programmi di differenziamento ematopoietico. Legandosi al DNA in corrispondenza degli elementi di risposta HOX, Hox11 modula reti trascrizionali che intersecano la segnalazione dello sviluppo e il rimodellamento della cromatina per controllare la proliferazione e le decisioni di destino cellulare. Un’espressione deregolata di TLX1 è collegata a stati alterati di espressione di geni dello sviluppo ed è stata associata alla leucemia linfoblastica acuta a cellule T, a supporto del suo impiego come nodo per studiare il rimaneggiamento trascrizionale oncogenico. Nei modelli cellulari umani, TLX1 rappresenta un regolatore facilmente manipolabile per indagare i circuiti di regolazione genica guidati da HOX e fenotipi di differenziamento dipendenti dal contesto.
Hox11 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di TLX1 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
Hox11 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus TLX1 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione TLX1, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di Hox11. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus TLX1 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da Hox11 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via Hox11 nelle cellule tumorali con espressione di TLX1 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.