Date published: 2026-7-19

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ALAS-E Plasmide di attivazione CRISPR (h): sc-403752-ACT

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Schede Tecniche
  • Specie Target: human
  • 20 µg di DNA plasmidico purificato, pronto per trasfezione; sufficiente fino a 20 trasfezioni
  • ALAS-E Plasmide di attivazione CRISPR (h) è un mediatore sinergico di attivazione (SAM) del sistema di attivazione trascrizionale disegnato per upregolare specificatamente l'espressione genica
  • ALAS-E CRISPR Activation Plasmid (h) consiste di tre plasmidi in proporzione 1:1:1 : un plasmide che codifica la nucleasi (D10A and N863A) Cas9 (dCas9) deattivata fusa al dominio di transattivazione VP64, ed un gene di resistenza alla blasticina; un plasmide che codifica per la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, ed un gene di resistenza all'igromicina;un plasmide che codifica un RNA guida di 20 nt target specifico, e un gene di resistenza alla puromicina.
  • Il complesso SAM legae una regione sito-specifica circa 200-250 nt a monte del sito di start trascrizionale e fornisce un robusto reclutamento di fattori trascrizionali per un'attivazione altamente efficiente del gene target
  • I gRNA codificati dal ALAS-E CRISPR Activation Plasmid (h) e dal ALAS-E CRISPR Activation Plasmid (h2) prendono di mira regioni regolatorie distinte a monte del sito di inizio della trascrizione di ALAS2. Uno o entrambi i modelli potrebbero essere disponibili
  • In seguito alla trasfezione, l'efficienza dll'attivazione genica può essere testata con WB, IF o IHC utilizzando l'anticorpo: ALAS-E Antibody (D-4): sc-166739
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    ALAS-E Plasmide di attivazione CRISPR (h)

    sc-403752-ACT
    20 µg
    $397.00

    ALAS2 umano codifica la 5-aminolevulinato sintasi 2 (ALAS-E), l’enzima mitocondriale eritroide-specifico e limitante la velocità nella biosintesi dell’eme, che condensa glicina e succinil-CoA per generare acido 5-aminolevulinico. La sua attività collega il metabolismo mitocondriale e l’utilizzo del ferro alla maturazione eritroide, controllando la disponibilità di eme per l’assemblaggio dell’emoglobina. La funzione di ALAS2 si intreccia con il metabolismo delle porfirine, l’omeostasi delle proteine mitocondriali e i programmi di differenziamento degli eritrociti. La disregolazione dell’espressione o dell’attività di ALAS2 è implicata in disordini ereditari dell’eme a livello eritroide, inclusi l’anemia sideroblastica legata all’X e fenotipi correlati alla protoporfiria, rendendolo un nodo chiave per studi meccanicistici dell’eritropoiesi e dell’equilibrio ferro–eme.

    ALAS-E Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di ALAS2 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.

    ALAS-E Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus ALAS2 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.

    Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione ALAS2, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di ALAS-E. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus ALAS2 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da ALAS-E nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via ALAS-E nelle cellule tumorali con espressione di ALAS2 silenziata o ridotta.

    Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.