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Villin Double Nickase Plasmid (h) | sc-400587-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Villin Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400587-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
VIL1 kodiert Villin, ein Ca²⁺‑reguliertes aktinbindendes Protein, das in intestinalen und anderen Epithelzellen angereichert ist. Dort bündelt, kappt und trennt es F‑Aktin, um den Aufbau von Mikrovilli und die Architektur des Bürstensaums zu unterstützen. Durch die dynamische Umgestaltung des apikalen Zytoskeletts trägt Villin zur epithelialen Polarität, zur Barrierefunktion sowie zu Prozessen bei, die mit Zellmigration und Wundheilung (Restitution) verknüpft sind. Eine veränderte VIL1‑Expression wird широко als Marker der epithelialen Differenzierung genutzt, und eine Fehlregulation villin‑assoziierter zytoskelettaler Programme wurde in Zusammenhängen von epithelialer Schädigung, Entzündung und Tumorbiologie untersucht. Als Gerüstprotein für die Aktindynamik verknüpft Villin Kalziumsignale und eine phosphoinositidabhängige Regulation mit der strukturellen Aufrechterhaltung der apikalen Oberfläche.
Villin Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des VIL1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von VIL1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die VIL1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit VIL1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.