Date published: 2026-7-13

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Smac Plasmide Double Nickase (m): sc-426096-NIC

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Schede Tecniche
  • Specie Target: mouse
  • 20 µg di DNA plasmidico purificato, pronto per trasfezione; sufficiente fino a 20 trasfezioni
  • Smac Plasmide Double Nickase (m) consiste in un paio di plasmidi ciascuno codificante una nucleasi Cas9 mutata D10A ed un RNA guida (gRNA) di 20 nt target specifico, disegnato per il silenziamento dell'espressione genica con una maggiore specificità rispetto alla controparte CRISPR/Cas9 KO
  • Le sequenze di gRNA appaiate sono offset di circa 20 bp per permettere lo specifico doppio nicking Cas9 mediato che mima un DSB
  • Un plasmide dei due contiene un gene per la resistenza alla puromicina per la selezione; l'altro plasmide nella coppia contiene un marker GFP per confermare la trasfezione visivamente.
  • Il Smac Double Nickase Plasmid (m) e il Smac Double Nickase Plasmid (m2) codificano per distinti design di gRNA accoppiati che prendono di mira Diablo. Uno o entrambi i design potrebbero essere disponibili
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    Smac Plasmide Double Nickase (m)

    sc-426096-NIC
    20 µg
    $410.00

    Il gene murino Diablo codifica Smac (secondo attivatore delle caspasi derivato dai mitocondri), una proteina dello spazio intermembrana mitocondriale rilasciata durante l’apoptosi intrinseca. Smac promuove l’attivazione delle caspasi legandosi alle proteine inibitrici dell’apoptosi (IAP), come XIAP e le cIAP, alleviando così la soppressione mediata dalle IAP su caspasi-3, -7 e -9. Attraverso questo asse regolatorio IAP–caspasi, Smac contribuisce a determinare la soglia dell’apoptosi mitocondriale a valle di stress cellulari, danni al DNA e segnali dello sviluppo. La deregolazione della segnalazione Smac/IAP è spesso studiata in contesti di sopravvivenza cellulare aberrante e resistenza all’apoptosi, inclusi modelli in oncologia e neurodegenerazione.

    Smac Il plasmide Double Nickase (m) consiste in una coppia di plasmidi ingegnerizzati per l'editing ad alta specificità del locus Diablo nelle linee cellulari mouse. Ciascun plasmide esprime una nickasi Cas9 D10A e un sgRNA distinto che prende di mira filamenti di DNA opposti all'interno di Diablo. Quando indirizzate verso siti adiacenti su filamenti di DNA opposti, le due nickasi generano tagli a filamento singolo sfalsati che insieme producono una rottura a doppio filamento sfalsata, richiedendo un'attività coordinata sul bersaglio da entrambe le guide. La rottura del DNA risultante viene risolta da vie di riparazione cellulare endogene, più comunemente attraverso la giunzione non omologa delle estremità (NHEJ), portando a inserzioni o delezioni che interrompono la funzione di Diablo. Richiedendo il coinvolgimento di due sgRNA nel locus bersaglio, l'approccio a doppia nickasi migliora la specificità dell'editing e fornisce una strategia CRISPR complementare per applicazioni in cui è desiderato un controllo aggiuntivo sulla precisione del targeting.

    Per supportare l'identificazione efficiente delle cellule modificate, un plasmide codifica la GFP per la visualizzazione fluorescente delle popolazioni trasfettate, mentre il plasmide di accompagnamento porta un gene di resistenza alla puromicina per la selezione antibiotica. Insieme, queste caratteristiche supportano l'arricchimento efficiente delle popolazioni co-trasfettate e semplificano la convalida dei cloni con Diablo interrotto.

    Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.