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Rab 7 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400465-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Rab 7 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400465-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
RAB7A kodiert die kleine GTPase Rab7, einen zentralen Regulator der Reifung später Endosomen, des Endosom–Lysosom-Transports sowie der Fusion von Autophagosomen mit Lysosomen. Durch die koordinierte Rekrutierung von Effektoren wie RILP und dem Tethering-Komplex HOPS unterstützt Rab7 lysosomale Abbauwege, die Herunterregulation von Rezeptoren und die Membranremodellierung im Endolysosomen-System. Die Rab7-Aktivität ist mit Nährstoffsensorik und Stressantworten verknüpft, einschließlich Mitophagie und dem allgemeinen autophagischen Flux, und prägt so die Proteostase sowie die Qualitätskontrolle von Organellen. Eine Dysregulation des RAB7A-vermittelten Transports wird mit neurodegenerativen und neuropathieassoziierten Phänotypen in Verbindung gebracht und ist auch für die Infektionsbiologie relevant, da Pathogene den endolysosomalen Transport manipulieren.
Rab 7 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RAB7A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RAB7A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RAB7A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RAB7A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.