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LASS6 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-403901-ACT | 20 µg | $397.00 |
CERS6 codifica per la ceramide sintasi 6 (LASS6), un enzima di membrana del reticolo endoplasmatico che catalizza la N-acilazione di sfinganina/sfingosina per generare ceramide C16. Modellando i pool cellulari di ceramide, LASS6 influenza il metabolismo degli sfingolipidi e la segnalazione a valle legata all’organizzazione dei microdomini di membrana, al traffico vescicolare e alle vie di risposta allo stress. Un’alterata attività di CERS6 è stata associata a una disregolazione dell’omeostasi lipidica e a cambiamenti in apoptosi, autofagia e segnalazione infiammatoria, rendendolo rilevante per studi sulla disfunzione metabolica e sui fenotipi oncogenici. Nelle cellule umane, la composizione di ceramide dipendente da CERS6 può modulare l’integrità mitocondriale e gli output di segnalazione mediati da recettori che influenzano la proliferazione e le decisioni sul destino cellulare.
LASS6 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di CERS6 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
LASS6 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus CERS6 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione CERS6, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di LASS6. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus CERS6 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da LASS6 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via LASS6 nelle cellule tumorali con espressione di CERS6 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.