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GPR120 Plasmide di attivazione CRISPR (m) | sc-437271-ACT | 20 µg | $397.00 |
Ffar4 codifica il recettore murino accoppiato a proteine G GPR120 (noto anche come FFAR4), un recettore sensibile ai lipidi attivato da acidi grassi a catena lunga e omega-3. GPR120 si accoppia principalmente alle vie di Gαq/11 e della β-arrestina per modulare la segnalazione del calcio intracellulare, l’attività di ERK/MAPK e programmi trascrizionali che influenzano la produzione di citochine e l’omeostasi metabolica. È espresso in tessuti metabolicamente attivi e correlati al sistema immunitario, collegando il sensing dei nutrienti alla funzione degli adipociti, alla polarizzazione dei macrofagi e alle risposte enteroendocrine intestinali. Una segnalazione FFAR4 deregolata è stata associata a infiammazione e a fenotipi metabolici, rendendolo un bersaglio utile per studiare, nei modelli murini, le vie legate all’obesità, i meccanismi della sensibilità all’insulina e l’immunometabolismo mediato dai lipidi.
GPR120 Il plasmide di attivazione CRISPR (m) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di Ffar4 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
GPR120 Il plasmide di attivazione CRISPR (m) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus Ffar4 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione Ffar4, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di GPR120. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus Ffar4 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da GPR120 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via GPR120 nelle cellule tumorali con espressione di Ffar4 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.