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| Nome del prodotto | Codice del prodotto | UNITÀ | Prezzo | Quantità | Preferiti | |
Deltex-1 Plasmide Double Nickase (h) | sc-404446-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Deltex-1 Plasmide Double Nickase (h2) | sc-404446-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
DTX1 codifica Deltex-1, una ligasi E3 dell’ubiquitina di tipo RING che funziona come regolatore dipendente dal contesto della segnalazione NOTCH e dei programmi trascrizionali a valle che controllano le decisioni di destino cellulare. Deltex-1 partecipa all’ubiquitinazione delle proteine e a eventi di traffico endocitico che modulano il turnover dei recettori e la durata del segnale, collegando l’output della via NOTCH alla differenziazione e all’omeostasi delle cellule immunitarie. Un’alterata attività di DTX1 è stata associata a una deregolazione dell’espressione genica dipendente da NOTCH e a stati aberranti di attivazione dei linfociti, rendendolo rilevante per studi sulla biologia delle neoplasie ematologiche e sulla segnalazione infiammatoria. In quanto regolatore nodale dell’ampiezza della via, Deltex-1 viene anche utilizzato per indagare il crosstalk tra proteostasi mediata dall’ubiquitina, controllo trascrizionale e reti di segnalazione dello sviluppo.
Deltex-1 Il plasmide Double Nickase (h) consiste in una coppia di plasmidi ingegnerizzati per l'editing ad alta specificità del locus DTX1 nelle linee cellulari human. Ciascun plasmide esprime una nickasi Cas9 D10A e un sgRNA distinto che prende di mira filamenti di DNA opposti all'interno di DTX1. Quando indirizzate verso siti adiacenti su filamenti di DNA opposti, le due nickasi generano tagli a filamento singolo sfalsati che insieme producono una rottura a doppio filamento sfalsata, richiedendo un'attività coordinata sul bersaglio da entrambe le guide. La rottura del DNA risultante viene risolta da vie di riparazione cellulare endogene, più comunemente attraverso la giunzione non omologa delle estremità (NHEJ), portando a inserzioni o delezioni che interrompono la funzione di DTX1. Richiedendo il coinvolgimento di due sgRNA nel locus bersaglio, l'approccio a doppia nickasi migliora la specificità dell'editing e fornisce una strategia CRISPR complementare per applicazioni in cui è desiderato un controllo aggiuntivo sulla precisione del targeting.
Per supportare l'identificazione efficiente delle cellule modificate, un plasmide codifica la GFP per la visualizzazione fluorescente delle popolazioni trasfettate, mentre il plasmide di accompagnamento porta un gene di resistenza alla puromicina per la selezione antibiotica. Insieme, queste caratteristiche supportano l'arricchimento efficiente delle popolazioni co-trasfettate e semplificano la convalida dei cloni con DTX1 interrotto.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.