
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
CXCR-3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401933-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CXCR-3 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401933-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CXCR3 kodiert CXCR-3, einen G‑Protein‑gekoppelten Chemokinrezeptor, der an interferoninduzierbare Liganden wie CXCL9, CXCL10 und CXCL11 bindet und so die Chemotaxis von Leukozyten steuert. Nach Aktivierung koppelt CXCR-3 vor allem an Gi-Signalwege und reguliert dadurch den Calciumfluss, die PI3K/AKT‑ und MAPK‑Signalwege, die Integrinaktivierung sowie die Umgestaltung des Zytoskeletts, welche Zellmigration und Gewebe-Homing kontrollieren. CXCR-3 ist ein zentraler Knotenpunkt in Typ‑I/II‑Interferon‑getriebenen Entzündungskreisläufen und prägt die Th1‑Polarisierung sowie das Trafficking aktivierter T‑Zellen und NK‑Zellen. Eine fehlregulierte CXCR3‑Signalübertragung wurde mit chronisch entzündlichen und autoimmunen Erkrankungen, transplantationsassoziierten Immunreaktionen und der Dynamik des Tumor‑Immunmikromilieus in Verbindung gebracht.
CXCR-3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CXCR3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CXCR3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CXCR3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CXCR3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.