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ANG I CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401766-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das menschliche **ANG**-Gen kodiert Angiogenin, eine sezernierte Ribonuklease, die an Zelloberflächenrezeptoren und Komponenten der extrazellulären Matrix bindet und dadurch das Verhalten von Endothelzellen, Stressantworten und den RNA-Stoffwechsel beeinflusst. ANG ist an Prozessen beteiligt, die mit Angiogenese und Nährstoffsignalgebung verknüpft sind, darunter die Modulation von aus rRNA/tRNA abgeleiteten Fragmenten und nachgeschaltete Effekte auf Proteinsynthese und Zellüberleben. Eine fehlregulierte ANG-Expression oder -Aktivität wurde mit vaskulärem Remodeling und neurodegenerativen Phänotypen in Verbindung gebracht und wird häufig im Kontext von Entzündung, Hypoxie und der Biologie des Tumormikromilieus untersucht. Diese Funktionen machen ANG zu einem geeigneten Ansatzpunkt, um parakrine Signalübertragung, RNA-Spaltung-abhängige Stressprogramme und Signalweg-Crosstalk zu untersuchen, der die Gewebehomöostase prägt.
ANG I Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ANG-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
ANG I Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ANG-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ANG-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen ANG I-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ANG-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von ANG I-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des ANG I-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ANG-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.