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PP2B-Aβ CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402853-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
PP2B-Aβ CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-402853-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
PPP3CB kodiert die katalytische Beta-Untereinheit von Calcineurin (PP2B-Aβ), einer Ca2+/Calmodulin-abhängigen Serin/Threonin-Phosphatase, die intrazelluläre Calciumsignale mit transkriptionellen und posttranslationalen Antworten koppelt. Calcineurin dephosphoryliert Transkriptionsfaktoren der NFAT-Familie und reguliert dadurch Genprogramme, die an Immun-Signalwegen, synaptischer Plastizität und der Anpassung an zellulären Stress beteiligt sind; zudem gibt es Überschneidungen mit MAPK-, Wnt- und zytoskelettalen Remodeling-Signalwegen. Eine fehlregulierte PPP3CB-Aktivität wurde mit veränderter neuronaler Erregbarkeit und neurodevelopmentalen Phänotypen in Verbindung gebracht, und aberrantes Calcineurin-Signaling wird im Kontext von Entzündung, Kardiomyozytenhypertrophie und Übergängen von Krebszellzuständen untersucht. Als zentraler Knotenpunkt der calciumabhängigen Signalübertragung bietet PP2B-Aβ einen gut handhabbaren Ansatzpunkt, um signalabhängige transkriptionelle Schaltkreise und phosphataseregulierte Netzwerke zu analysieren.
PP2B-Aβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PPP3CB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PP2B-Aβ Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PPP3CB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PPP3CB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PP2B-Aβ-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PPP3CB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PP2B-Aβ-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PP2B-Aβ-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PPP3CB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.