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Sall4 Plasmide di attivazione CRISPR (m) | sc-430262-ACT | 20 µg | $397.00 |
Il gene murino Sall4 codifica un fattore di trascrizione a dita di zinco che mantiene i programmi di pluripotenza e autorinnovamento, coordinando al contempo l’impegno di linea durante la prima embriogenesi e lo sviluppo delle cellule germinali. Sall4 si integra con le reti trascrizionali fondamentali delle cellule staminali, includendo un crosstalk regolatorio con OCT4/POU5F1, SOX2 e NANOG, e influenza lo stato della cromatina e i moduli di repressione/attivazione trascrizionale. Un’attività di SALL4 deregolata è associata a differenziazione anomala, fenotipi dello sviluppo e programmi trascrizionali oncogenici in diversi sistemi modello, rendendolo un nodo rilevante per lo studio di “stemness”, proliferazione e specificazione del destino cellulare. Nel topo, Sall4 è spesso utilizzato per indagare il controllo epigenetico dell’espressione genica e la logica molecolare dei circuiti regolatori dello sviluppo.
Sall4 Il plasmide di attivazione CRISPR (m) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di Sall4 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
Sall4 Il plasmide di attivazione CRISPR (m) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus Sall4 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione Sall4, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di Sall4. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus Sall4 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da Sall4 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via Sall4 nelle cellule tumorali con espressione di Sall4 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.