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ILT-2 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-403335-ACT | 20 µg | $397.00 |
Il gene umano **LILRB1** codifica **ILT-2** (LIR-1/CD85j), un immunorecettore inibitorio espresso su cellule NK, monociti, cellule dendritiche e su sottopopolazioni di linfociti T e B, che si lega a molecole HLA di classe I sia classiche sia non classiche, inclusa **HLA-G**. In seguito al legame con il ligando, ILT-2 segnala attraverso motivi **ITIM** reclutando le fosfatasi **SHP-1/SHP-2**, attenuando le vie dei recettori attivatori e riducendo citotossicità, produzione di citochine e maturazione delle cellule presentanti l’antigene. Questa segnalazione di tipo “checkpoint” contribuisce a plasmare la tolleranza immunitaria alle interfacce tissutali e modula le risposte a infezioni e stress cellulare. Un’attività deregolata di **LILRB1/ILT-2** è stata implicata in un’alterata regolazione immunitaria in contesti infiammatori e autoimmuni e in meccanismi di evasione immunitaria all’interno dei microambienti di malattia.
ILT-2 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di LILRB1 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
ILT-2 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus LILRB1 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione LILRB1, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di ILT-2. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus LILRB1 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da ILT-2 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via ILT-2 nelle cellule tumorali con espressione di LILRB1 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.