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CCS Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-402130-ACT | 20 µg | $397.00 |
La CCS umana (chaperone del rame per la superossido dismutasi) è una metallochaperone citosolica che trasferisce rame a SOD1 e ne promuove la maturazione, sostenendo la difesa antiossidante grazie a una dismutazione efficiente dei radicali superossido. Regolando la metallazione e la stabilità di SOD1, CCS contribuisce all’omeostasi redox, alla funzione mitocondriale e alla resilienza cellulare allo stress ossidativo in diversi tipi cellulari. Alterazioni nella gestione del rame e nell’attività dell’asse SOD1/CCS sono rilevanti per la ricerca sulla neurodegenerazione e per studi più ampi sulle patologie legate allo stress ossidativo, incluse infiammazione e disfunzione metabolica. Per questo, l’espressione e la funzione di CCS sono comunemente investigate in modelli che esaminano la segnalazione dipendente dal rame, la proteostasi e le vie di risposta allo stress.
CCS Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di CCS senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
CCS Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus CCS nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione CCS, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di CCS. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus CCS nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da CCS nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via CCS nelle cellule tumorali con espressione di CCS silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.